[Ciencia][Microbiología] OBSERVACIÓN Y TINCIÓN DE MICROORGANISMOS

Les enseñare a realizar la observación y tinción de microorganismos con tres técnicas:

las cuales podrán realizar sin dificultad alguna con un conocimiento básico de microorganismos y técnicas de laboratorio de microbiología, como lo son cultivo por estriado, punción e inoculación.

Observar la morfología bacteriana en suspensión acuosa, la configuración de las colonias crecidas sobre agar y algunas estructuras bacterianas.

Esta prueba se utiliza cuando se tienen muchas muestras y se quiere tener una rápida caracterización de la población bacteriana. Colocamos una gota de la solución de KOH al 3% sobre el porta objetos, luego abrimos con sumo cuidado el tubo con el cultivo de la bacteria y tomamos una asada con el asa de inoculación, tratando de disgregarla con la gota de KOH, ahora suspendemos el lisado en la lamina porta-objetos y se pudo observar un delgado hilo viscoso, casi incoloro, lo que indica que la bacteria es gran negativa.

En esta experiencia se llevó a cabo la tinción de esporas (Método de Schaeffer-Fulton); al igual que en la experiencia anterior se prepara un frotis bacteriano, con tres asadas del cultivo de *Sporolactobacillus sp.*, resuspendiendola en una lamina porta-objetos a la que previamente le habíamos colocado una gota de agua (en lugar de Solución salina NaCl 0,85% p/v, como se suele indicar). Luego de preparar el frotis se montó la torre de calentamiento, que en este caso fue un trípode con rejilla y un mechero. Se cubrió el frotis con un papel de filtro y lo coloreamos con verde malaquita, la lamina se montó en el trípode con rejilla en un vaso precipitado que contenía agua, y se comenzaron a contar 10 minutos desde que esta comenzó a hervir, procurando mantener el papel humedecido durante ese tiempo. Luego de que se cumplió el tiempo establecido se tomó con una pinza la lámina, se apagó el mechero y se procedió a lavar la lamina con agua corriente, el papel de filtro se retira naturalmente y añadimos safranina durante 30 segundos, volvemos a lavar, colocamos un cubre-objetos, dejamos secar naturalmente y procedemos a observarlo en el microscopio. (Ver imágenes 1, 2 y 3)

En esta experiencia se llevó a cabo la tinción ácido-resistente (Método de Ziehl-Neelsen); al igual que en la experiencia anterior se prepara un frotis bacteriano, pero en este caso con tres asadas del cultivo de *Mycobacterium smegmatis* y *S. aureus*, luego de preparar el frotis se le coloco el papel de filtro y se coloreo con carbol-fucsina, la lámina se montó en el trípode con rejilla en un vaso precipitado de contenía agua, y se comenzaron a contar 10 minutos desde que esta comenzó a hervir, procurando mantener el papel humedecido durante ese tiempo. Luego de que se cumplió el tiempo establecido tomamos con una pinza la lámina, apagamos el mechero y lavamos con agua corriente, el papel de filtro se retira naturalmente y decoloramos con alcohol-acido, lavamos y añadimos azul de metileno por un minuto, lavamos con agua corriente nuevamente y colocamos el cubre-objeto, dejando secar de forma natural para finalmente observarla en el microscopio (Ver imágenes 4, 5 y 6)

Se realizó la experiencia conocida como “prueba de KOH”, se utilizó E. coli para esta prueba, efectivamente una sustancia viscosa fue lo que se evidenció en el porta objetos y un hilo de ese material viscoso es lo que se observaba al levantar el asa.

En la experiencia siguiente se tiñeron esporas, la batería trabajada fue Sporolactobacillus sp., se logró divisar con mucha dificultad las esporas, sin embargo se hizo imposible distinguir la posición de la misma.

La experiencia de la tinción ácido-resistente, se realizó dos veces, en el primer montaje la cantidad de bacterias en la muestra no era suficiente entonces no se observó ningún organismo al microscopio. En el segundo montaje se varió en el método, para extender la gota, es decir, en lugar de utilizar una lámina porta objetos como se hizo en el primer montaje se extendió la gota con el asa de inoculación de manera que quedara más cantidad de bacterias en el frotis. Se observaron bacilos color rosado.

Para la diferenciación de bacterias Gram+ de las Gram- se hizo uso de un método muy sencillo y eficaz que consiste en el uso de KOH, esta técnica se basa también en la pared externa de las células, las bacterias Gram+ con sus duras y gruesas paredes de peptidoglicano no hacen lisis al añadirles el KOH, mientras que las bacterias Gram- al poseer un pared más delgada y porosa, se lisan y permiten la salida de ADN de la célula, lo que provoca que el frotis se convierta en un líquido viscoso (Zinsser, 1994). En el laboratorio se hizo un frotis bacteriano con E. coli donde se agregó KOH, por la aparición del hilo viscoso se llegó a la conclusión de que es Gram- .

La edad del cultivo es sumamente importante al hacer la tinción, ya que cultivos más viejo de 24 horas pueden perder su habilidad de retener el complejo cristal violeta.

Como método específico se utilizó la tinción de esporas por el método de Schaeffer-Fulton, permitiendo su observación de un color verdoso. Se puede decir que la producción de esporas confiere una gran ventaja a estas bacterias sobre las que no las producen ya que estas estructuras, gracias a sus membranas, permiten la sobrevivencia del organismo a condiciones ambientales extremas y su diseminación cuando estas condiciones vuelvan a ser aptas (Prescot y col, 2002).

Otro método diferencial utilizado fue el ácido-resistente o método de Ziehl-Neelsen, esta técnica se basa en la concentración del ácido mycólico en el interior de la célula, este ácido está presente en Mycobacterium smegmatis, estas células absorben el color del carbol fucsina y cuando se agrega el alcohol-ácido estas no lo absorben ya que su concentración de ácido interna es casi idéntica a la exterior; S. aureus también absorbe el carbol fucsina pero al agregarle el alcohol-ácido este puede penetrar en sus células lo que provoca que pierda el color (Zinsser, 1994)

1. El test de solubilidad en KOH es sumamente fácil de preparar y con tan solo la presencia de un hilo sabremos que se trata de una bacteria gram negativa, es decir al levantar el asa de inoculación y observar presencia/ausencia de filancia identificaremos a que genero (positiva o negativa) pertenece la bacteria, en este caso E. coli es gram negativa.

2. La tinción de Shaeffer-Fulton, permite visualizar esta estructura bacteriana, difícil de teñir, siendo muy útil para detectar una contaminación por endosporas, es necesario de un buen microscopio para la visualización de la posición de las mismas.

3. La técnica de Z-N fuerza la penetración de la fucsina básica en la pared celular mediante la acción combinada del fenol y el calor. El calentamiento aumenta la energía cinética de las moléculas del colorante lo cual también facilita su entrada a las bacterias y el fenol actúa a modo de disolvente, permitiendo el paso del colorante básico que se une a los ácidos micólicos con carga negativa. Por lo tanto es sumamente útil ya que las bacterias que resisten la decoloración son de color rojo, sobre un color azul (que lo provee el colorante de contraste Azul de metileno).

Por lo tanto se logró clasificar bacterias en gram positivas o negativas con las experiencias antes mencionadas, además gracias a la tinción fue posible observar la forma de cada bacteria con la que se trabajó. Aunque la información obtenida no es suficiente para caracterizar a las bacterias, igual es un buen comienzo para iniciarnos en el estudio de las mismas.

• Prescot, L; Harley, J; Klein, D. 2002. Microbiología. Editorial Mc Graw Hill. 5º edición. España.

• Joklink, W; Willett, H; Amos, B; Wilfert, C. 1994. Zinsser, Microbiología. Editorial médica panamericana. 20º edición. Buenos Aires.

• Guía de prácticas de Laboratorio de Microbiología General BC-3361; de la división de ciencias biológicas y el departamento de biología celular de la USB.

OBSERVACIÓN: Los procedimientos que se llevaron a cabo fueron basados en la “Guía de prácticas de Laboratorio de Microbiología General BC-3361; de la división de ciencias biológicas y el departamento de biología celular” de la USB.